|
больше ...
Термины запроса в документе
Реферат
[RU] 1. Способ подавления вирулентности бактерий в бактериальной биомассе, отличающийся тем, что к бактериальной биомассе добавляют смесь индукторов фосфорилирования внутриклеточных белков, используемых в качестве ингибиторов вирулентности микроорганизмов. 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве индукторов фосфорилирования внутриклеточных белков используют активаторы накопления циклического аденозинмонофосфата. 3. Способ по п.2, отличающийся тем, что в качестве активаторов накопления циклического аденозинмонофосфата используют папаверин, бендазол и дипиридамол. 4. Способ по п.3, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол находятся в виде солей. 5. Способ по п.3, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол находятся в виде оснований. 6. Способ по п.3, отличающийся тем, что концентрации папаверина, бендазола и дипиридамола находятся в пределах от 0,0001 ±0,00005 до 2,0 ±0,05 г/%. 7. Способ подавления вирулентности бактерий у инфекционного больного, отличающийся тем, что инфекционному больному вводят смесь папаверина, бендазола и дипиридамола в концентрациях от 0,0001 ±0,00005 до 2,0 ±0,05 г/% за 1-10 дней до назначения антибиотика или параллельно с ним. 8. Способ по п.7, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол вводят пациенту парентерально. 9. Способ по п.7, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол вводят пациенту перорально. 10. Способ по п.7, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол вводят пациенту ректально. 11. Способ по п.7, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол наносят пациенту на область поражения при ожогах и инфицированных гнойных ранах. 12. Способ ускорения прироста бактериальной биомассы путем добавления в питательную среду низкомолекулярных ускорителей роста, отличающийся тем, что в качестве низкомолекулярных ускорителей роста микроорганизмов используют смесь индукторов фосфорилирования внутриклеточных белков. 13. Способ по п.12, отличающийся тем, что в качестве индукторов фосфорилирования внутриклеточных белков используют активаторы накопления циклического аденозинмонофосфата. 14. Способ по п.13, отличающийся тем, что в качестве активаторов накопления циклического аденозинмонофосфата используют папаверин, бендазол и дипиридамол. 15. Способ по п.14, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол находятся в виде солей. 16. Способ по п.14, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол находятся в виде оснований. 17. Способ по п.14, отличающийся тем, что концентрации папаверина, бендазола и дипиридамола находятся в пределах от 0,0001 ±0,00005 до 2,0 ±0,05 г/%.
Полный текст патента
(57) Реферат / Формула: 1. Способ подавления вирулентности бактерий в бактериальной биомассе, отличающийся тем, что к бактериальной биомассе добавляют смесь индукторов фосфорилирования внутриклеточных белков, используемых в качестве ингибиторов вирулентности микроорганизмов. 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве индукторов фосфорилирования внутриклеточных белков используют активаторы накопления циклического аденозинмонофосфата. 3. Способ по п.2, отличающийся тем, что в качестве активаторов накопления циклического аденозинмонофосфата используют папаверин, бендазол и дипиридамол. 4. Способ по п.3, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол находятся в виде солей. 5. Способ по п.3, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол находятся в виде оснований. 6. Способ по п.3, отличающийся тем, что концентрации папаверина, бендазола и дипиридамола находятся в пределах от 0,0001 ±0,00005 до 2,0 ±0,05 г/%. 7. Способ подавления вирулентности бактерий у инфекционного больного, отличающийся тем, что инфекционному больному вводят смесь папаверина, бендазола и дипиридамола в концентрациях от 0,0001 ±0,00005 до 2,0 ±0,05 г/% за 1-10 дней до назначения антибиотика или параллельно с ним. 8. Способ по п.7, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол вводят пациенту парентерально. 9. Способ по п.7, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол вводят пациенту перорально. 10. Способ по п.7, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол вводят пациенту ректально. 11. Способ по п.7, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол наносят пациенту на область поражения при ожогах и инфицированных гнойных ранах. 12. Способ ускорения прироста бактериальной биомассы путем добавления в питательную среду низкомолекулярных ускорителей роста, отличающийся тем, что в качестве низкомолекулярных ускорителей роста микроорганизмов используют смесь индукторов фосфорилирования внутриклеточных белков. 13. Способ по п.12, отличающийся тем, что в качестве индукторов фосфорилирования внутриклеточных белков используют активаторы накопления циклического аденозинмонофосфата. 14. Способ по п.13, отличающийся тем, что в качестве активаторов накопления циклического аденозинмонофосфата используют папаверин, бендазол и дипиридамол. 15. Способ по п.14, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол находятся в виде солей. 16. Способ по п.14, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол находятся в виде оснований. 17. Способ по п.14, отличающийся тем, что концентрации папаверина, бендазола и дипиридамола находятся в пределах от 0,0001 ±0,00005 до 2,0 ±0,05 г/%. Евразийское 025623 (13) B1 патентное ведомство (12) ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ К ЕВРАЗИЙСКОМУ ПАТЕНТУ (45) Дата публикации и выдачи патента 2017.01.30 (21) Номер заявки (51) Int. Cl. A61P31/02 (2006.01) C12N1/20 (2006.01) C12N1/38 (2006.01) C12P1/04 (2006.01) 201300205 (22) Дата подачи заявки 2011.12.28 (54) СПОСОБ УСКОРЕНИЯ ПРИРОСТА БАКТЕРИАЛЬНОЙ БИОМАССЫ И ПОДАВЛЕНИЕ ВИРУЛЕНТНОСТИ БАКТЕРИЙ (43) 2014.11.28 (56) US-A1-20090005340 (86) PCT/RU2011/001060 US-A1-20n0262988 (87) WO 2013/100792 2013.07.04 (71) (73) Заявитель и патентовладелец: ФАРБЕР БОРИС СЛАВИНОВИЧ; ФАРБЕР СОФЬЯ БОРИСОВНА (RU) (72) Изобретатель: Мартынов Артур Викторович (UA), Фарбер Борис Славинович, Фарбер Софья Борисовна (RU) (74) Представитель: Васильева Г.С. (RU) (57) Изобретение относится к способам подавления вирулентности бактерий и ускорения прироста бактериальной биомассы путем добавления смеси индукторов фосфорилирования внутриклеточных белков, а именно смеси активаторов накопления цАМФ, в частности смеси папаверина, бендазола и дипиридамола. Область техники Изобретение относится к медицине, ветеринарии и биотехнологии, а именно, производству генно-инженерных и других биотехнологических продуктов, и предназначено для лечения инфекционных заболеваний человека и животных, а также в биотехнологии для усиления наращивания биомассы микроорганизмов и производства на их основе медицинских и ветеринарных биопрепаратов, пищевых добавок, пробиоти-ков и молочнокислых заквасок, производства вакцин. Предшествующий уровень техники В последнее время отмечается интенсификация разработок биотехнологических методов получения биомассы микроорганизмов для производства препаратов белковой природы, значительный процент которых принадлежит продуктам бактериального происхождения (вакцины, анатоксины, пробиотики и проч.) [1]. Одним из путей решения задачи оптимизации синтеза биотехнологических белковых и небелковых компонентов и наращивания микробной массы является поиск и моделирование стимуляторов роста микроорганизмов. В последнее время публикуется много научных работ по изучению стимулирующего воздействия различных физических, химических и других факторов на биологические свойства клеток [2]. Широким спектром биологической активности характеризуются стимуляторы химического происхождения - имидазол, изохинолин и их производные, которые входят в структуру многих природных и синтетических соединений, способных индуцировать интенсивность роста микробной популяции [1]. Использование энхансеров является важным достижением в области биотехнологических производств, они могут повышать как процент выхода биотехнологических белковых продуктов, так и наращивание микробной массы вне рамок физиологической нормы на порядок и выше. Таким образом, есть теоретическая возможность значительно ускорить скорость накопления микробной массы и синтез микроорганизмами белковых продуктов. Повышение ростовой и ферментативной активности микроорганизмов способствовать увеличению биомассы клеток и соответственно метаболитов для дальнейшего их эффективного применения в различных отраслях хозяйства, в частности в биотехнологической, медицинской и фармацевтической промышленности. Для того, чтобы патогенный микроорганизм мог вызвать инфекционную болезнь он должен обладать одной характеристикой - вирулентностью - способностью не только проникать в макроорганизм, размножаться в нем, но и подавлять его защитные механизмы, следствием чего и является развитие инфекционной болезни. Вирулентность - признак не видовой, как патогенность, а штаммовый, т.е. присущ не всему виду, а конкретным штаммам. Вирулентность можно также определить как фенотипическое проявление патогенного генотипа микроорганизмов. Как количественный признак вирулентность, в отличие от качественного - патогенности, имеет единицы измерения. Она измеряется количеством, т.е. дозой микроорганизмов, вызывающих определенной биологический эффект. Это могут быть: DCL (dosis certae letalis) - это абсолютно летальная доза - минимальное количество возбудителя, которое вызывает гибель 100% взятых в опыт лабораторных животных; DLM (dosis letalis minima) - это минимальная летальная доза - минимальное количество возбудителя, вызывающее гибель 95% взятых в опыт лабораторных животных; LD50 - это минимальное количество возбудителя, вызывающее гибель 50% взятых в опыт лабораторных животных (используется для измерения вирулентности наиболее часто). При этом всегда указывается вид лабораторного животного, на котором определялась данная доза, так как чувствительность разных видов лабораторных животных к тем или иным микроорганизмам различна. Обязательно указывается также и способ введения культуры микроорганизмов - внутрибрюшин-но, внутримышечно, интраназально, внутривенно. Вирулентность является лабильным признаком. Она может изменяться как в сторону повышения, так и снижения, как in vivo, так и in vitro. При максимальном снижении вирулентности патогенные микроорганизмы могут стать авирулентными, т.е. невирулентными, но вирулентные микроорганизмы - всегда патогенны. Вирулентность реализуется через ряд последовательных процессов взаимодействия микробных клеток с клетками и тканями макроорганизма: адгезивность - способность прикрепляться к клеткам; колонизационность - способность размножаться на их поверхности; инвазивность - способность проникать в клетки и прилежащие ткани и образование биологически активных продуктов, в том числе токсинов. Адгезия микроорганизмов к рецепторам чувствительных клеток макроорганизма - это важнейший элемент их взаимодействия, так как если не произошло адгезии микроорганизмов, то обычно они и не размножаются, а выводятся из организма. Многие микроорганизмы в процессе эволюции приобрели особые морфологические и химические структуры, которые обеспечивают адгезию. К ним относятся ворсинки и адгезины - специфические структуры (белки и углеводы) на поверхности микробной клетки, соответствующие рецепторам клеток макроорганизма. Известен метод и композиция, а также способы их применения, позволяющие значительно ускорить рост микроорганизмов in vitro. Микроорганизмы, например, грибы или бактериальные клетки при культивировании на питательных средах в присутствии экзогенных энхансеров, таких как пиколиновая кислота и пиколинаты металлов растут значительно быстрее и в большем количестве. Например, пиколи нат хрома усиливает прирост дрожжей в 30 раз (количество колоний), при этом индекс прироста количества клеток в среднем в присутствии стимуляторов колеблется от 0,4 до 0,5 раз [2]. При значительном количестве колоний (увеличение количества колоний в 30 раз) все же прирост количества мироорганиз-мов был незначительным (на 15-20% больше, чем в контроле), кроме того, сильными активаторами были соли пиколиновой кислоты и тяжелых металлов - хрома, цинка и железа, что в биотехнологическом производстве является негативным фактором из-за риска взаимодействия биотехнологического продукта с тяжелыми металлами. Это важно в связи с обязательной проверкой на тяжелые металлы биотехнологических продуктов. Также известен метод подавления вирулентности бактерий путем добавления в среду культивирования эффективных количеств фенилпропаноидных ингибиторов [3]. Недостатком данного изобретения является явная генотоксичность добавляемого компонента и невозможность его применения в медицине. Вещество хотя и подавляло экспрессированные факторы вирулентности, но влияло исключительно на гены, причем необратимо. Такие бактерии, хотя и утрачивали факторы вирулентности, становились явными мутантами и наследовали признаки низкой вирулентности в будущих поколениях. Раскрытие изобретения В основу изобретения поставленная задача разработать активаторы роста микроорганизмов, не содержащие тяжелых металлов, нетоксичные для человека и животных, не обладающие мутагенным и канцерогенным действием и увеличивающие прирост количества микробных клеток в 2 и более раз, также обладающие способностью подавлять вирулентность микроорганизмов, что позволяет использовать их в лечении инфекционных заболеваний у людей и животных путем применения энхансеров перед курсом противомикробной терапии. Поставленная задача решается путем добавления в питательную среду для культивирования микроорганизмов смеси активаторов роста микроорганизмов с доказанной безвредностью для человеческого организма, что приводит к ускорению появления первых колоний и увеличению прироста количества микробных клеток в 2-4 раза, а также для лечении инфекционных заболеваний в качестве ингибиторов вирулентности микроорганизмов перед применением курса антимикробной терапии или параллельно с ним. Причем в качестве активаторов роста микроорганизмов используют активаторы накопления циклического аденозинмонофосфата, такие как папаверин, бендазол и дипиридамол, где их массовое соотношение колеблется в пределах от 1: 100 до 100:1 и в пределах концентраций в питательной среде от 0,0001 до 0,1 г/%, а папаверин, бендазол и дипиридамол могут находиться как в виде солей, так и в виде оснований, а для лечебных целей человеку они могут быть введены перорально, инъекционно или ректально перед применением антибиотика или вместе с ним. Лучший вариант осуществления изобретения Пример 1. Применение энхансеров роста в наращивании биомассы бактерий Р. aeruginosa для последующего их использования в вакцинном производстве. Динамика накопления микробной массы имеет важное значение для получения полезных веществ микробного происхождения. Аллостерические активаторы циклического аденозинмонофосфата способствуют повышению метаболизма бактерий. В результате такого воздействия увеличивается количество микробных клеток. При добавлении энхансеров в концентрации 0,1+0,05% количество микроорганизмов достоверно не отличалась от количества микроорганизмов при культивировании на контрольной среде. При концентрации энхансеров 0,01 +0,005% количество микробных клеток увеличивалось. Максимальное количество микроорганизмов достигалась при добавлении энхансера А в концентрации 0,01+0,005% (табл. 3-8). Кроме того, под влиянием энхансеров наблюдалось усиление пигментации - колонии становились насыщенного зеленого цвета и визуально увеличивались в размере. Как показывают данные табл. 1, количество микробных клеток под влиянием активаторов увеличивается по сравнению с контролем (среда без энхансеров). Количество микробных клеток P. aeruginosa при культивировании на питательном агаре с добавлением N - среднее значение количества микробных клеток штаммов микроорганизмов, млрд/мл; n - среднее отклонение; V - скорость размножения, клеток/ч; % - масса/объем; А - папаверина гидрохлорид; В - бендазол; С - дипиридамола аскорбат; энхансеров при посевной дозе 106 I Питательная среда - питательный агар (МПА) ~ I Энхансеры, концентрация P. aeruginosa АТСС 27853 P. aeruginosa АТСС 9027 P. aeruginosa 66-16 N±n N±n N±n 0,1±0,05%А 4,2±0,1 1 1,05 5,1 ±0,42 1,06 4,9 ±0,43 1,06 0,1 ±0,05 %В 4,3± 0,4 4 1,05 4,6 ±0,55 1,06 4,4 ±0,36 1,05 0,1±0,05 % С 5,8 ±0,77 1,07 4,5 ±0,28 1,05 4,1 ±0,2 1,05 0,01±0,005 % А 5,2 ±0,39 1,06 5,5 ±0,410 1,07 5,7 ±0,511 1,07 0,01 ±0,005 % В 4,8 ±0,512 1,06 5,3 ±0,213 1,06 5,4 ±0,314 1,07 0,01 ±0,005 % С 6,1 ±0,715 1,07 4,9 ±0,416 1,06 4,8 ±0,317 1,06 0,001±0,0005 % А 5,8±0,418 1,07 6,3±0,619 1,08 6,3 ±0,4 20 1,08 0,001±0,0005 % В 5,2 ±0,221 1,06 5,6 ±0,522 1,07 5,6 ±0,523 1,07 0,001±0,0005 % С 5,2 ±0,2 1,04 5,2 ±0,224 1,06 5,1 ±0,425 1,06 Контроль 3,2±0,2 1,04 3,4±0,1 1,04 3,5 ±0,3 1,04 N - среднее значение количества микробных клеток микроорганизма, млрд/мл; n - среднее отклонение; V - скорость размножения, клеток/ч; % - масса/объем; А - папаверина гидрохлорид; В - бендазол; С - дипиридамола аскорбат; * - разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Как показывают данные табл. 2, количество микробных клеток P. aeruginosa (клинические штаммы) под влиянием активаторов увеличивается по сравнению с контролем (среда без энхансеров). Таким образом, при вытапливании на питательном агаре значительно увеличивается количество микробных клеток клинических штаммов P. aeraginosa № 25 и № 53 по сравнению со штаммом P. aeruginosa № 15. Наибольшее количество микробных клеток клинических штаммов P. aeraginosa образуется на питательном агаре при добавлении энхансеров в концентрации 0,0001+0,00005% А и равнялось (4,8+0,4)-(7,6±0,6) млрд/мл. Тогда как наименьшее количество микробных клеток было при добавлении энхансеров в концентрации 0,1% А и равнялось (3,5+0,1)-(3,8+0,4) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 2 показывают, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров А, В или С в концентрации от 0,001 +0,0005 до 0,1+0,05% и контролем статистически значимы. Это свидетельствует об эффективности использования стимуляторов роста различной концентрации для повышения количества микробных клеток. Далее проверяли, как изменяется количество микробных клеток при культивировании P. aeraginosa на средах, полученных из эритроцитарной массы, с добавлением различных концентрации энхансеров (табл. 3). N - среднее значение количества микробных клеток микроорганизмов, млрд/мл; n - среднее отклонение; V - скорость размножения, клеток/ч; % - масса/объем; А - папаверина гидрохлорид; В - бендазол; С - дипиридамола аскорбат; * - разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Как видно из данных табл. 3, получены следующие показатели количества выросших микробных клеток при культивировании на средах из эритроцитарной массы с добавлением энхансеров: при концентрации 0,1 +0,05% количество микробных клеток составляло (2,2-3,8) млрд/мл независимо от штамма P. aeruginosa и вида энхансеров (А, В или С). При концентрации 0,01+0,005% количество микробных клеток увеличивается и составляет (4,1-4,9) млрд/мл для всех штаммов P. aeruginosa и всех видов энхансе-ров. При концентрации 0,001+0,0005% количество микробных клеток P. Aeruginosa уменьшается, чем при концентрации 0,01 +0,005% и составляет (3,3-4,0) млрд/мл. Т.е. наибольшее количество микробных клеток наблюдается при добавлении энхансеров в концентрации 0,01%. В контроле этот показатель составлял (3,2-3,5) млрд/мл. Т.е. наибольшее количество микробных клеток на средах, полученных с эритроцитарной массой, наблюдалась при концентрации энхансеров 0,001+0,0005% В и равнялось (3,6+0,5)-(4,0+0,2) млрд/мл, а наибольшая скорость размножения равнялась 1,05 клеток/ч. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансеров 0,1+0,05% В и равнялось (2,3+0,3)-(2,6+0,5) млрд/мл, а наименьшая скорость размножения равнялась 1, 02 клеток/ч. Результаты статистической обработки данных табл. 3 свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеры А, В или С в концентрации от 0,001+0,0005 до 0,1+0,05% и контролем статистически значимы. Это свидетельствует об эффективности использования стимуляторов роста А, В или С различной концентрации для повышения количества микробных клеток. Как изменяется количество микробных клеток при культивировании Р. aeruginosa на средах, полученных из зерновой барды, с добавлением различной концентрации энхансеров представлено в табл. 4. N - среднее значение количества микробных клеток микроорганизмов, млрд/мл; n - среднее отклонение; V - скорость размножения, клеток/ч; % - масса/объем; А - папаверина гидрохлорид; В - бендазол; С - дипиридамола аскорбат; * - разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Как видно из данных табл. 4, получены следующие показатели количества выросших микробных клеток при культивировании на средах из зерновой барды с добавлением энхансеров: при концентрации 0,1+0,05% количество микробных клеток составляло (4,2-5,8) млрд/мл независимо от штамма P. aerugi-nosa и вида энхансеров (А, В или С). При концентрации 0,01 +0,005% количество микробных клеток увеличивается и составляет (6,2-6,8) млрд/мл для всех штаммов P. aeruginosa и всех видов энхансеров. При концентрации 0,001 +0,0005% количество микробных клеток P. aeruginosa меньше, чем при концентрации 0,01+0,005% и составляет (5,1-5,4) млрд/мл. Т.е. наибольшее количество микробных клеток наблюдается при добавлении энхансеров в концентрации 0,01 +0,005% и составляет (6,2-6,8) млрд/мл. В контроле этот показатель был равен (3,2-3,5) млрд/мл. Таким образом, на средах, полученных из зерновой барды, количество выросших микробных клеток с использованием энхансеров превышает в 2 раза количество клеток, которые растут на контрольных средах, и выше показателей количества микробных клеток на эрит-роцитарной массе. Т.е. наибольшее количество микробных клеток на средах, полученных из зерновой барды, наблюдалась при концентрации энхансера 0,01+0,005% С и равнялась (6,4+0,7)-(6,8+0,4) млрд/мл, а наибольшая скорость размножения равнялась 1,08 кл./ч. Тогда как наименьшая концентрация микробных клеток наблюдалась при концентрации энхансера 0,1 +0,05% В и равнялась (4,3+0,3)-(4,6+0,5) млрд/мл, а наименьшая скорость размножения равнялась 1,05 кл./ч. Результаты статистической обработки данных табл. 4 свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров А, В или С в концентрации от 0,001+0,0005 до 0,1+0,05% и контролем статистически значимы. Это свидетельствует об эффективности использования стимуляторов роста А, В или С различной концентрации для повышения количества микробных клеток. Дальнейшие исследования были направлены на разработку комбинаций энхансеров (табл. 5). N - среднее значение количества микробных клеток микроорганизмов, млрд/мл; n - среднее отклонение; V - скорость размножения, клеток/ч; % - масса/объем; А - папаверина гидрохлорид; В - бендазол; С - дипиридамола аскорбат; * - разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Как свидетельствуют данные табл. 5, комбинация двух энхансеров А и В в концентрации 0,01+0,005% увеличивает количество микробных клеток по сравнению с контролем в 3-4 раза и составляет (7,2-8,2)х109/мл против (3,1-2,8)х109/мл в контроле. Комбинация двух энхансеров А и С в концентрации 0,01% увеличивает количество микробных клеток по сравнению с контролем в 4 раза и равно (8,3-9,4)х109/мл против (3,1-2,8)х109/мл в контроле. Примерно такие же данные наблюдаются при комбинации энхансеров В и С. Комбинация трех стимуляторов роста А, В, и С в концентрации 0,01% увеличивает количество микробных клеток почти в 6 раз и составляет (10,5-11,8)х109/мл. При культивировании P. aeruginosa количество микробных клеток при добавлении двух энхансеров А и В в концентрации 0,001 +0,0005% составляло (9,3-10,4)х109/мл, при совместном применении двух энхансеров А и С в концентрации 0,001+0,0005% составляло (9,9-10,8) млрд/мл, при добавлении энхансеров В и С в концентрации 0,001+0,0005% составляло (9,1-9,3) млрд/мл. Тогда как при добавлении трех стимуляторов А, В и С в концентрациях 0,001% количество микробных клеток составляла (11,6 -12,6)х109 млрд/мл, что в 6,5 раз больше, чем в контроле. А наибольшая скорость размножения равнялась 1,12 клеток/ч. Тогда как наименьшее количество микробных клеток наблюдалась при комбинации энхансеры А и В в концентрации 0,01%, а наименьшая скорость размножения составляла 1,08 клеток/ч. Таким образом, при культивировании P. aemginosa на средах, полученных из зерновой барды с добавлением комбинации энхансеров, скорость размножения увеличивается в 1,2 раза по сравнению с контролем. Т.е. количество микроорганизмов, которые культивируются на средах с зерновой барды с добавлением комбинации энхансеров значительно увеличивается по сравнению с количеством бактерий, которые культивируются на средах, полученных с эритроцитарной массы с добавлением комбинации энхан серов, что свидетельствует о целесообразности использования сред с зерновой барды для культивирования P. aeruginosa. Результаты статистической обработки данных табл. 5 свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании комбинации энхансеров А, В, С в концентрации от 0,001+0,0005 до 0,1+0,05% и контролем статистически значимы. Это свидетельствует об эффективности использования стимуляторов роста А, В, С в комбинации в концентрациях от 0,001+0,0005 до 0,1+0,05% для повышения количества микробных клеток. Как изменяется количество микробных клеток при культивировании P. aeruginosa под влиянием комбинации энхансеров на средах с эритроцитарной массой, показано в табл. 6. Таблица 6 Количество микробных клеток P. aeruginosa под влиянием комбинации энхансеров на средах с эритроци- N - среднее значение количества микробных клеток микроорганизмов, млрд/мл; n - среднее отклонение; V - скорость размножения, клеток/ч; % - масса/объем; А - папаверина гидрохлорид; В - бендазол; С - дипиридамола аскорбат; * - разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Как свидетельствуют данные табл. 6, комбинация двух энхансеров А и В в концентрации 0,01% увеличивает количество микробных клеток по сравнению с контролем в 2 раза и составляет (4,3-4,5)х109/мл против (2,2-3,1)х109/мл в контроле. Комбинация двух энхансеров А и С увеличивает количество микробных клеток до (4,1-4,9)х109/мл. Практически также изменяется количество микробных клеток при добавлении комбинации двух энхансеров В и С. Комбинация трех стимуляторов роста А, В и С в концентрации 0,01% увеличивает количество микробных клеток в 3 раза и составляет (5,3-5,8) млрд/мл. При культивировании P. aeruginosa на средах с эритроцитарной массой количество клеток при добавлении двух энхансеров А и В в концентрации 0,001+0,0005% составляет (4,5-4,7)х109/мл, при комбинации двух энхансеров А и С в той же концентрации количество клеток составило (3,8-4, 1)х109/мл, при добавлении энхансеров В и С в концентрации 0,001% количество клеток составляло (3,7-4,0)х109/мл. Тогда как при добавлении трех стимуляторов А, В и С в концентрации 0,001% количество клеток составляло (6,2-6,4)х109/мл, что в 3 раза больше, чем в контроле. Таким образом, наибольшая скорость размножения составляла 1,08 клеток/ч. при добавлении трех стимуляторов А, В и С в концентрации 0,001+0,0005%. Таким образом, количество микроорганизмов, которые культивируются на средах, полученных с эритроцитарной массы с добавлением комбинации энхансеров, значительно увеличивается, что свидетельствует о целесообразности использования данных сред для культивирования микроорганизмов P. aeruginosa. Различия между количеством микробных клеток при использовании комбинации энхансеров А, В, С в концентрациях от 0,001+0,0005 до 0,1+0,05% и контролем статистически значимы. Это свидетельствует об эффективности использования стимуляторов роста различной концентрации в комбинации для повышения количества микробных клеток. В табл. 7 представлена экспозиция появления колоний P. aeruginosa на разных средах без стимуляторов роста. Таблица 7 * - питательный агар; ** - эритроцитарная масса; *** - зерновая барда. Как видно из данных табл. 7, колонии микроорганизмов появлялись через 12 ч инкубации: на питательном агаре - 2 колонии, на эритроцитарной массе было 6 колоний, а на зерновой барде - 10 колоний. После 18 ч инкубации на питательном агаре наблюдалось 40 колоний, на эритроцитарные массе - 60 колоний, а на зерновой барде - 100 колоний. Т.е. наибольшее количество колоний наблюдалась после 18 ч инкубации и составляло 102 КОЕ/мл, а наибольшая скорость размножения равнялась 5,5 кол./ч. Применение энхансеров влияло на появление колоний (табл. 7). При концентрации 0,1 +0,05% А колонии синегнойной палочки появлялись после 10 ч инкубации, тогда как на контрольных средах после 12-14 ч. Концентрация 0,01 +0,005% А уменьшала срок культивирования и колонии микроорганизмов регистрировались после 6-8 ч. Внесение в среду 0,001%-ной концентрации стимулятора А способствовало появлению колоний через 7 ч. Особенных различий по сроку инкубации между концентрациями эн-хансеров 0,01+0,005% и 0,001+0,0005% на появление колоний не наблюдалось. Разница в количестве колоний между стимуляторами роста А, В и С при различных сроках инкубации достоверно не отличалась. * - питательный агар; ** - эритроцитарная масса; *** - зерновая барда. Как свидетельствуют данные табл. 8, при добавлении энхансеров в концентрации 0,1 +0,05% А колонии появлялись после 10 ч инкубации, тогда как на контрольных средах после 12-14 ч. Количество колоний после 10 ч инкубации составило: 20 колоний - на питательном агаре, 31 колония - на эритроци-тарной массе и 40 колоний - на зерновой барде. После 11 ч инкубации: на питательном агаре - 100 колоний, на эритроцитарной массе - 45 колоний, на зерновой барде - 100 колоний. После 12 ч инкубации наблюдалось более 100 колоний на всех этих средах. После 18 ч инкубации количество колоний составило - 103 на всех вышеперечисленных средах. Т.е. наибольшее количество колоний при добавлении энхансера А в концентрации 0,1% наблюдалась после 18 ч инкубации и составляла 5х103 КОЕ/мл, а наибольшая скорость размножения равнялась 278 колоний/ч. В табл. 9 показано, как влияют стимуляторы роста в концентрации 0,01% А на появление колоний на различных питательных средах (питательный агар, эритроцитарная масса, зерновая барда). Таблица 9 Экспозиция появления колоний на питательных средах с добавлением энхансеров в концентрации 8 * 1,0 10** 1,25 g *** 1,0 14* 1,5 16** 1,8 }g *** 2,0 24* 2,4 36** 3,6 -jg *** 3,8 98 * 8,9 57** 5,2 60*** 5,4 148* 12,3 90** 7,5 100*** 8,3 106* 5,5x104 4x 106** 22 x 104 5x106*** 27 x 104 * - питательный агар; ** - эритроцитарная масса; *** - зерновая барда. Как свидетельствуют данные табл. 9, при добавлении энхансеров в концентрации 0,1+0,05% независимо от вида энхансера колонии регистрировались после 6-8 ч инкубации, тогда как на контрольных средах после 12-14 ч. Количество колоний после 6-7 ч инкубации составляло: 4 колонии - на питательном агаре, 6 колоний - на эритроцитарной массе, 7 колоний - на зерновой барде. После 10 ч инкубации: 24 колонии - на питательном агаре, 36 колоний - на эритроцитарной массе и 38 -на зерновой барде. После 11 ч инкубации: 98 колоний - на питательном агаре, 57 колоний - на эритромассы и 60 колоний - на зерновой барде. После 12 ч инкубации регистрировалось 148 колоний - на питательном агаре, 90 колоний -на эритромассы и 100 колоний - на зерновой барде. После 18 ч инкубации наблюдалось 106 колоний на всех вышеперечисленных средах. Т.е. наибольшее количество колоний при добавлении энхансеры А в концентрации 0,01+0,005% наблюдалась после 18 ч инкубации и составляла 5х106 КОЕ/мл, а наибольшая скорость размножения равнялась 27 х 104 колоний/ч. Как показано в табл. 10, особых отличий по сроку инкубации между концентрациями энхансеров 0,01+0,005% и 0,001+0,0005% А на время появление колоний не наблюдалось. При добавлении энхансе-ров в концентрации 0,1 +0,05% А колонии появлялись после 7 ч инкубации, тогда как на контрольных средах после 12-14 ч. Количество колоний после 7-8 ч инкубации составило: 9 колоний - на питательном агаре, 10 колоний - на эритроцитарной массе и 8 колоний - на зерновой барде. После 11 ч инкубации: 100 колоний - на питательном агаре, 60 колоний - на эритромассе и зерновой барде. После 12 ч инкубации 150 колоний - на питательном агаре, 100 колоний - на эритроцитарной массе и 160 колоний - на зерновой барде. После 18 ч инкубации -106 колоний на всех средах. Т.е. наибольшее количество колоний при добавлении энхансера А в концентрации 0,001% наблюдалась после 18 ч инкубации и составляла 6х106 КОЕ/мл, а самая наибольшая скорость размножения составила 33,3х104 колоний/ч. * - питательный агар; ** - эритроцитарная масса; *** - зерновая барда. Пример 2. Редукция вирулентности P. aeruginosa под влиянием энхансеров роста на примере подавления адгезивных свойств. Известно, что адгезия микроорганизмов - первый этап колонизации, главный и определяющий фактор их вирулентности и патогенности. С помощью адгезинов микробы распознают рецепторы на мембранах клеток, прикрепляются к ним и колонизируют различные поверхностные структуры клеточной стенки. Способность бактерий к адгезии и колонизации поверхностей закреплена естественным отбором. Эта функция необходима бактериям при сапрофитном существовании. Например, легионеллы активно прикрепляются к поверхности цианобактерий, холерные вибрионы активно колонизируют зоопланктон, хитин которых используется ими как источник питания и стимулирует размножение холерных вибрионов [4]. Изучение адгезии микроорганизмов имеет особое значение для медицинской микробиологии, получившее клиническое подтверждение: установлено, что при отсутствии адгезинов, ни бактерии, ни грибы не могут расти и формировать колонии, а если нет колонизации, то нет инфекции и болезни [5]. Адгезия бактериального патогена может осуществляться к компонентам внеклеточного матрикса -фибронектина, коллагена, ламинину и др. Матриксные белки имеют последовательность RGD, с которой взаимодействуют интегрины клеточной поверхности. Тем самым белки внеклеточного матрикса способствуют прилипанию бактерий к клеткам-мишеням хозяина. Адгезия бактерий к таким белкам носит специфический характер и каждый патоген реализует эту возможность по-своему. Для проявления па-тогенности некоторых бактерий критическое значение имеет их взаимодействие с матриксными белками. Большинство грамотрицательных бактерий прикрепляются к эпителиальным клеткам человека и животных с помощью адгезинов, представляющих собой особые органеллы [6]. Многие патогенные микроорганизмы способны проникать в клетки хозяина и активно в них размножаться. Для проникновения в клетки бактерии используют адгезивные молекулы, названные инвазинамы. Самый распространенный механизм включает активацию сигналов в клетке хозяина, позволяющих инвазию бактерий с помощью запуска нормальных клеточных реакций. Учитывая наличие веществ, которые способны влиять на проявление адгезивности, прослеживается возможность направлять их действие на предотвращение развития инфекционного процесса [7].Одним из способов блокировки механизмов адгезии является использование антибактериальных препаратов в низких концентрациях, ингибирующих процесс закрепления патогенов в зоне первичного инфицирования [8].С этой целью возможно применение и специфических бактериофагов [9]. Для определения адгезивных свойств микроорганизмов наиболее удобная модель, в которой в качестве клеток макроорганизма используют эритроциты человека. Увеличение биомассы клеток под воздействием энхансеров приводит к изменению некоторых биохимических тестов. Одним из них является адгезивные свойства микроорга низмов (табл. 11) * - разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Как свидетельствуют данные определения степени адгезии по ИА при культивировании микроорганизма P. aeruginosa на средах с энхансерами, которые приведены в табл. 11, индексы адгезии отличались от показателей контроля. Штаммы, которые были среднеадгезивными сохраняли эти свойства при культивировании со стимуляторами роста отдельно. Раздельное использование энхансеров в концентрации 0,001+0,0005% снижало адгезивную активность штаммов синегнойной палочки к (2,4±0,4)-(2,7±0,4), штаммы становились низкоадгезивными. Комбинация энхансеров в концентрации 0,001+0,0005% способствовала снижению адгезивной активности штаммов синегнойной палочки до (1,4+0,3)-(1,8+0,4). Среднеадгезивные штаммы под влиянием стимуляторов роста становились низкоадгезивными. Индекс адгезии составлял (1,4-1,7) против (3,1-3,2) при вытапливании на среде без добавления неметаболитных стимуляторов роста. В результате статистической обработки данных табл. 11 было показано, что различия между индексами адгезии штаммов, культивируемых на средах со стимуляторами роста А, В, С отдельно в концентрации от 0,001 +0,0005 до 0, 01 +0,005% или в комбинациях, и контролем статистически значимы. Это свидетельствует об эффективности использования энхансеров А, В, С в концентрации от 0,001 +0,0005 до 0,1 +0,05% для снижения адгезивной активности микроорганизмов. Пример 3. Больной Н. 42 лет, страдающий открытой формой туберкулеза легких, вызванного мультирези-стентной микобактерией туберкулеза. Противотуберкулезные препараты первой и второй линии оказались неэффективны (применяли традиционную терапию согласно критериям ВОЗ: изониазид (Н), ри-фампицин (R), пиразинамид (Z), стрептомицин (F)) Больной многократно оперирован. Больному назначили внутривенно капельно папаверин 1% 2 мл, дибазол 2% 2 мл и дипиридамол 0,5% 4 мл в одной капельнице на 400 мл 0,9% раствора натрия хлорида внутривенно капельно медленно один раз в день. На третий день применения смеси наблюдалось уменьшение кашля и болей, а через 15 дней на Rq-грамме наблюдались только остаточные явления туберкулеза в виде кальцинатов, согласно клиническим и микробиологическим данным наступила ремиссия. В течение года при осмотре пациента рецидива заболевания не наблюдалось. Объективно: Rq-ремиссия, микобактерии-, М-, R-. Пример 4. Больной С., 70 лет, госпитализирован в клинику с: диагнозом открытый туберкулез верхней доли правого легкого, деструкция+, микобактерии+, M+, K+, резистентность+. Ранее больной получал лечение изониазид (Н), рифампицин (R), пиразинамид (Z), стрептомицин (F), которое оказалось неэффективным. Больному применили ту же схему (Н, R, Z, F), но добавили 1 раз в день папаверин 1% 2 мл, дибазол 2% 2 мл и дипиридамол 0,5% 4 мл в одной капельнице на 400 мл 0,9% раствора натрия хлорида внутривенно капельно медленно один раз в день. Первые признаки клинического улучшения наблюдались уже через 4 дня в виде уменьшения интенсивности кашля и болей, а также уменьшения отделения мокроты. Через 14 дней при Rq-обследовании установлена ремиссия, которая длится 12 мес. Объективно: Rq-ремиссия, ми-кобактерии-, М-, R-. Промышленная применимость Изобретение относится к микробиологии, а именно биотехнологии, фармации и медицине и может быть использовано для ускорения наращивания биомассы пробиотиков, генно-инженерных лекарств, дрожжей, вакцинных штаммов микроорганизмов, молочно-кислых заквасок, а также может быть использовано для подавления вирулентности бактерий и грибов в терапии инфекционных заболеваний человека и животных. Использованные источники информации 1. Глик Б. Молекулярная биотехнология [Текст]/Б. Глик, Дж. Пастернак. - М.: Мир, 2002. С. 115. 2. Применение активных частот электромагнитного излучения миллиметрового и сантиметрового диапазона в микробиологии/А.Х. Тамбиев, Н.Н. Кирикова, А.А. Лукьянов//Наукоемкие технологии. 2002. № 1. С. 26-33 3. Витюк Н.В. Анализ связи структура - активность клофелин-подобных имидазолинов на основе перечисленного описания структуры молекул [Текст]/Н.В. Витюк//Хим.-фарм. журн. - 1997. - т. 31. - № 4. - С. 44-47. 4. US Patent 4997765 (Microorganism growth acceleration) Gary W. Evans, Filed Jul. 29, 1988, Date of Patent Mar. 5, 1991. 5. US Patent Application Publication US 2010/0249234 A1 Sep. 30, 2010 (Methods of reducing virulence in bacteria) Ching-Hong Yang. 6. Адгезивные и некоторые другие свойства Vibrio cholerae TCP+ СТХ-, изолированных из объектов внешней среды Ростовской области в 2002 г./Н. Р. Телесманич, Ю. Л. Ломов, И. X. Бардых [и др.]//Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. 2004. № 6. С. 3-6. 7. Kawasaki Y. Inhibitory effects of bovine lactoferrin on the Adherence of enterotoxigenic Escherichia coli to host cells/Kawasaki Y., Tazume S., Shimizu K., Matsuzawa H., Dosako S., Isoda H., Tsukiji M., Fuji-mura R., Muranaka Y., Isihida H.//Biosci-Biotechnol-Biochem. 2000. Vol. 64. № 2. P. 348-354. 8. Николаев А. Ю. Свойства адгезина и антиадгезина Pseudomonas fluorescens/А. Ю. Николаев, Д. И. Проссер//Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. 2000. Т. 69, № 2. С. 237-242. 9. Welty W. K. Proinflammatory cytokines increase in sepsis after anti-adhesion molecule therapy/Welty W. K. E., Carraway M. S., Ghio A., Kemtrow S. P., Huang Y. C, Piantadosi С. A.//Shock. 2000. Vol. 13. № 5. P. 404-409. 10. Vranes J. J. Effect of subminimal ingibitory concentrations of azithromycin on adherence of Pseudo-monas aeruginosa to polystyrerene/Vranes J. J.//Chemother. 2000. Vol. 12. № 4. P. 280-285. 11. Асланов Б. И. Обоснование применение бактериофага для борьбы с синегнойной инфекцией в травматологическом стационаре: автореф. дис. на получение научн. степени канд.мед.наук: спец. 03.07.00 "Микробиология"/Б. И. Асланов. Санкт-Петербург, 2001. С. 24. ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ 1. Способ подавления вирулентности бактерий в бактериальной биомассе, отличающийся тем, что к бактериальной биомассе добавляют смесь индукторов фосфорилирования внутриклеточных белков, используемых в качестве ингибиторов вирулентности микроорганизмов. 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве индукторов фосфорилирования внутриклеточных белков используют активаторы накопления циклического аденозинмонофосфата. 3. Способ по п.2, отличающийся тем, что в качестве активаторов накопления циклического адено-зинмонофосфата используют папаверин, бендазол и дипиридамол. 4. Способ по п.3, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол находятся в виде солей. 5. Способ по п.3, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол находятся в виде оснований. 6. Способ по п.3, отличающийся тем, что концентрации папаверина, бендазола и дипиридамола находятся в пределах от 0,0001+0,00005 до 2,0+0,05 г/%. 7. Способ подавления вирулентности бактерий у инфекционного больного, отличающийся тем, что инфекционному больному вводят смесь папаверина, бендазола и дипиридамола в концентрациях от 1. 0,0001+0,00005 до 2,0+0,05 г/% за 1-10 дней до назначения антибиотика или параллельно с ним. 8. Способ по п.7, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол вводят пациенту парентерально. 9. Способ по п.7, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол вводят пациенту пе-рорально. 10. Способ по п.7, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол вводят пациенту ректально. 11. Способ по п.7, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол наносят пациенту на область поражения при ожогах и инфицированных гнойных ранах. 12. Способ ускорения прироста бактериальной биомассы путем добавления в питательную среду низкомолекулярных ускорителей роста, отличающийся тем, что в качестве низкомолекулярных ускорителей роста микроорганизмов используют смесь индукторов фосфорилирования внутриклеточных белков. 13. Способ по п.12, отличающийся тем, что в качестве индукторов фосфорилирования внутриклеточных белков используют активаторы накопления циклического аденозинмонофосфата. 14. Способ по п.13, отличающийся тем, что в качестве активаторов накопления циклического аде-нозинмонофосфата используют папаверин, бендазол и дипиридамол. 15. Способ по п.14, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол находятся в виде солей. 16. Способ по п.14, отличающийся тем, что папаверин, бендазол и дипиридамол находятся в виде оснований. 17. Способ по п.14, отличающийся тем, что концентрации папаверина, бендазола и дипиридамола находятся в пределах от 0,0001+0,00005 до 2,0+0,05 г/%. Евразийская патентная организация, ЕАПВ Россия, 109012, Москва, Малый Черкасский пер., 2 1- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 2- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 3- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 4- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 5- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 6- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 7- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 8- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 9- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 10- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 11- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 12- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 13- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 14- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 15- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 16- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 17- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 18- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 19- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 20- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 21- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 22- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 23- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 24- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 25- разница показателей статистически достоверна (p <0,05). Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера А составила (4,2+0,2)-(5,1+0,4)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера В составло (4,3+0,3)-(4,6+0,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,1+0,05% концентрации энхансера С составляло (4,1+0,2)-(5,8+0,7)х 109/мл. При 0,01 +0,005% концентрации энхансера А количество микробных клеток увеличивается до (5,0-5,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01+0,005% концентрации энхансера В составляло (4,8+0,5)-(5,4+0,3)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,01% концентрации энхансера С составляла (4,8+6,3)-(6,1+0,7)х109/мл. Концентрация 0,001% энхансера А способствует накоплению микробных клеток до (6,0-6,5)х109/мл. Количество микробных клеток при 0,001% энхансера В составляло (5,2+0,2)-(5,6+0,5)х109/мл. При 0,001+0,0005% концентрации энхансера С количество микробных клеток составляло (3,2+0,2)-(5,2+0,2)х109/мл. Таким образом, как и при образовании колоний, так и при накоплении микробных клеток активность проявляет энхансер А в концентрации 0,001 +0,0005%, который способствует накоплению микробных клеток в 1,5-2 раза больше в сравнении с другими активаторами роста. Т.е. образование наибольшего количества микробных клеток на питательном агаре наблюдалась при концентрации энхансера 0,001+0,0005% А и равнялось (5,8+0,4)-(6,3+0,6) млрд/мл. Тогда как самое маленькое количество микробных клеток наблюдалось при концентрации энхансе-ра 0,1+0,05% В и равнялось (4,3+0,4)-(4,6+0,5) млрд/мл. Результаты статистической обработки данных табл. 1. свидетельствуют о том, что различия между количеством микробных клеток при использовании энхансеров различной концентрации статистически значимы, что свидетельствует об эффективности использования энхансеров для повышения количества микробных клеток. Клинические штаммы в силу своей особой адаптации к неблагоприятным условиям формируют устойчивость ко многим факторам, в частности к лекарственным препаратам. Поэтому были отобраны штаммы P.aeruginosa с поливалентной антибиотико-резистентностью для проверки воздействия на них стимуляторов роста (табл. 2). 025623 025623 - 1 - - 1 - (19) 025623 025623 - 1 - - 1 - (19) 025623 025623 - 2 - - 3 - (19) 025623 Таблица 1 025623 Таблица 1 - 4 - - 3 - 025623 Таблица 2 025623 Таблица 2 - 4 - - 4 - 025623 Таблица 3 025623 Таблица 3 - 5 - - 5 - 025623 Таблица 4 025623 Таблица 4 - 6 - - 6 - 025623 025623 - 7 - - 7 - 025623 025623 Таблица 8 - 9 - - 10 - 025623 Таблица 11 025623 - 13 - - 12 - 025623 025623 - 15 - - 15 -
|